Экология и культуральные особенности грибов рода Hericium (Russulales, Basidiomycota) в Республике Дагестан, Россия

Цель работы – представить сведения о первой находке Hericium cirrhatum в Республике Дагестан, новых местонахождениях Hericium coralloides в регионе, их экологических особенностях, а также провести анализ культуральных характеристик новых штаммов Hericium в условиях in vitro.

Авторами собран оригинальный материал в ходе собственных полевых микологических обследований лесных экосистем в Республике Дагестан в 2023–2025 годах. Гербарные образцы и штаммы грибов были изучены с помощью методов световой микроскопии, твердофазного культивирования, молекулярного анализа ярДНК, а также качественной оценки ферментативных активностей. Все изученные образцы хранятся в Микологическом гербарии Ботанического института им. В.Л. Комарова РАН (LE) и Коллекции культур базидиомицетов LE‐BIN (Санкт‐Петербург).

Впервые для Республики Дагестан отмечен Hericium cirrhatum, выявленный в национальном парке «Самурский», установлены новые местонахождения охраняемого в регионе вида H. coralloides на территории Казбековского и Магарамкентского районов. Описаны культурально‐морфологические признаки трех новых дикариотических штаммов H. cirrhatum и H. coralloides. Проведена качественная оценка их лигноцеллюлолитического и деградационного потенциала. Полученные данные могут быть использованы в природоохранной практике, в том числе мероприятиях по сохранению генофонда редких и малоизвестных видов грибов.

1. Boddy L., Crockatt M.E., Ainsworth A.M. Ecology of Hericium cirrhatum, H. coralloides and H. erinaceus in the UK // Fungal ecology. 2011. V. 4. N 2. P. 163–173. http://dx.doi.org/10.1016/j.funeco.2010.10.001

2. Kostanda E., Musa S., Pereman I. Unveiling the chemical composition and biofunctionality of Hericium spp. fungi: a comprehensive overview // International Journal of Molecular Sciences. 2024. V. 25. N 11. Art. 5949. https://doi.org/10.3390/ijms25115949

3. Koga J., Thorn R.G., Langer E. A multilocus phylogeny of Hericium (Hericiaceae, Russulales) // Persoonia. 2025. V. 55. P. 141–157. https://doi.org/10.3114/persoonia.2025.55.04

4. Contato A.G., Conte‐Junior C.A. Lion’s Mane Mushroom (Hericium erinaceus): a neuroprotective fungus with antioxidant, anti‐inflammatory, and antimicrobial potential — a narrative review // Nutrients. 2025. V. 17. N 8. Art. 1307. https://doi.org/10.3390/nu17081307

5. Bizjak M.Č., Pražnikar Z.J., Kenig S., Hladnik M., Bandelj D., Gregori A., Kranjc K. Effect of erinacine A‐enriched Hericium erinaceus supplementation on cognition: a randomized, doubleblind, placebo‐controlled pilot study // Journal of Functional Foods. 2024. V. 115. Art. 106120. https://doi.org/10.1016/j.jff.2024.106120

6. Narmuratova Z., Bisko N., Mustafin K., Al‐Maali G., Kerner A., Bondaruk S., Suleimenova Zh., Kalieva A., Akhmetsadykov N., Zhakipbekova A., Lomberg M. Screening of medicinal mushroom strains with antimicrobial activity and polysaccharides production // Turkish Journal of Biochemistry. 2023. V. 48. N 3. P. 290–297. https://doi.org/10.1515/tjb‐2022‐0235

7. Menon A., Jalal A., Arshad Z., Nawaz F.A., Kashyap R. Benefits, side effects, and uses of Hericium erinaceus as a supplement: a systematic review // Frontiers in Nutrition. 2025. V. 12. Art. 1641246. https://doi.org/10.3389/fnut.2025.1641246

8. Tabibzadeh F., Alvandi H., Hatamian‐Zarmi A., Kalitukha L., Hamed A., Ebrahimi‐Hosseinzadeh B. Antioxidant activity and cytotoxicity of exopolysaccharide from mushroom Hericium coralloides in submerged fermentation // Biomass Conversion and Biorefinery. 2024. V. 14. P. 26953–26963. https://doi.org/10.1007/s13399‐022‐03386‐0

9. Williams L.M., Berthon B.S., Stoodley I.L., Williams E.J., Wood L.G. Medicinal mushroom extracts from Hericium coralloides and Trametes versicolor exert differential immunomodulatory effects on immune cells from older adults in vitro // Nutrients. 2023. V. 15. N 9. Art. 2227. https://doi.org/10.3390/nu15092227

10. Zhang J., Zhang J., Zhao L., Shui X., Wang L.A., Wu Y. Antioxidant and anti‐aging activities of ethyl acetate extract of the coral tooth mushroom, Hericium coralloides (Agaricomycetes). International Journal of Medicinal Mushrooms. 2019. V. 21. N 6. pp. 561–570. https://doi.org/10.1615/IntJMedMushrooms.2019030840

11. Li Y., Cai J., Li X., Hu X., Zhang J., Wu X., Fu J. Domestication cultivation and nutritional analysis of Hericium coralloides // Journal of Fungi. 2025. V. 11. N 11. Art. 785. https://doi.org/10.3390/jof11110785

12. Guan Y., Shi D.Y., Wang S.M., Sun Y.Y., Song W.Y., Liu S.Y., Wang C.Y. Hericium coralloides ameliorates Alzheimer’s disease pathologies and cognitive disorders by activating Nrf2 signaling and regulating gut microbiota // Nutrients. 2023. V. 15. N 17. Art. 3799. https://doi.org/10.3390/nu15173799

13. Guan Y., Wang C.Y., Li L.Z., Dai X.J., Liu Y., Hsiang T., Liu S.Y., Wang D. Structural characterization of Hericium coralloides polysaccharide and its neuroprotective function in Alzheimer’s disease // International Journal of Biological Macromolecules. 2024. V. 277. Part 1. Art. 133865. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2024.133865

14. Song J.L., Xin Y., Zhou Z.F., Kang X.P., Zhang Y., Yuan W.D., Yu B. Biological characteristics and domestication of a wild Hericium coralloides // Horticulturae. 2025. V. 11. N 8. Art. 917. https://doi.org/10.3390/horticulturae11080917

15. Iwade I. Studies on Japanese fungi. (I) Several new and rare species of fungi // Bulletin of the Tokyo Imperial University Forests. 1944. V. 33. P. 49–64.

16. Николаева Т.Л. Флора споровых растений СССР. Т. VI. Грибы (2): Ежовиковые грибы. Москва – Ленинград: Изд‐во АН СССР, 1961. 435 с.

17. Бухарова Н.В., Змитрович И.В., Псурцева Н.В., Кияшко А.А., Волобуев С.В. Афиллофоровые грибы (Basidiomycota) заповедника «Уссурийский» (Приморский край, Дальний Восток России) // Биота и среда природных территорий. 2021. N 3. С. 35–55. https://doi.org/10.37102/2782‐1978_2021_3_3

18. Большаков С.Ю., Волобуев С.В., Ежов О.Н., Паломожных Е.А., Потапов К.О. Афиллофороидные грибы европейской части России: аннотированный список видов. СанктПетербург: Изд‐во СПбГЭТУ «ЛЭТИ», 2022. 578 c.

19. Красная книга Российской Федерации. Растения и грибы. 2‐е офиц. изд. Москва: ВНИИ «Экология», 2024. 944 с.

20. Красная книга Карачаево‐Черкесской Республики. Черкесск: Нартиздат, 2024. 400 с.

21. Красная книга Краснодарского края. Растения и грибы. 3‐е изд. Краснодар, 2017. 850 с.

22. Красная книга Республики Адыгея: редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды животных, растений и грибов. В 2 частях. Часть 1. Растения и грибы. Издание третье. Воронеж: ООО «Славянская», 2023. 392 с.

23. Ребриев Ю.А., Светашева Т.Ю., Ширяев А.Г., Змитрович И.В. Базидиальные макромицеты аридных территорий югозапада России. Ростов‐на‐Дону: Издательство ЮНЦ РАН, 2024. 232 с.

24. Чернецкая З.С. Материалы к изучению флоры грибов Северной Осетии // Труды Северо‐Кавказской ассоциации научно‐исследовательских институтов. 1929. Т. 52. N 3. С. 1–116.

25. Красная книга Ставропольского края. Том 1. Растения. Ставрополь, 2013. 383 с.

26. Красная книга Кабардино‐Балкарской Республики. Изд. 2‐е. Нальчик: Печатный двор, 2018. 494 с.

27. Красная книга Республики Северная Осетия‐Алания. Владикавказ: Перо и Кисть, 2022. 356 с.

28. Красная книга Чеченской Республики. 2‐е изд. Ростов‐на‐Дону: Южный издательский дом, 2020. 480 с.

29. Красная книга Республики Дагестан. Махачкала: Типография ИП Джамалудинов М.А., 2020. 800 с.

30. Volobuev S.V. Aphyllophoroid fungi of the “Samurskiy” National Park (Dagestan) // Микология и фитопатология. 2020. Т. 54. N 4. С. 235–243. https://doi.org/10.31857/S002636482004011X

31. Volobuev S.V. Antrodia hyalina (Polyporales, Basidiomycota), new species to the Caucasus // Ботанический вестник Северного Кавказа. 2021. N 1. С. 28–34. https://doi.org/10.33580/24092444_2021_1_28

32. Volobuev S.V., Shakhova N.V. Monitoring of protected fungal species in Samursky national park // Ботанический вестник Северного Кавказа. 2022. N 2. С. 7–13. https://doi.org/10.33580/24092444_2022_2_7

33. Ismailov A.B., Volobuev S.V., Ivanushenko Yu.Yu. Alpha diversity of lichenized and aphyllophoroid fungi in two 1ha forest plots in the Samursky National Park (Republic of Dagestan, Russia) // Юг России: экология, развитие. 2023. Т. 18. N 4. С. 51–63. https://doi.org/10.18470/1992‐1098‐2023‐4‐51‐63

34. Volobuev S.V. Sidera tibetica (Hymenochaetales, Basidiomycota), a new species to Russia // Микология и фитопатология. 2023. Т. 57. N 6. С. 394–400. https://doi.org/10.31857/S0026364823060156

35. Volobuev S.V., Ismailov A.B., Ivanushenko Yu.Yu. Mycolichenological portrait of alder forest: alpha diversity revealed in 1ha plot in the Samursky National Park (Republic of Dagestan, Russia) // Юг России: экология, развитие. 2024. Т. 19. N 3. С. 219–229. https://doi.org/10.18470/1992‐10982024‐3‐21

36. Volobuev S.V., Ismailov A.B. DNA barcoding of xylobiont species of fungi and lichens from the Samursky National Park (Republic of Dagestan, Russia): first results // Микология и фитопатология. 2024. Т. 58. N 6. С. 496–500. https://doi.org/10.31857/S0026364824060089

37. Bernicchia A., Gorjón S.P. Corticiaceae s. l. Fungi Europaei. V. 12. Alassio, Edizioni Candusso, 2010, 1008 p.

38. Shakhova N.V., Volobuev S.V. Culture characteristics and enzymatic activity of Sarcodontia crocea (Basidiomycota) strains collected from the Central Russian Upland // Микология и фитопатология. 2020. Т. 54. N 6. С. 446–451. https://doi.org/10.31857/S0026364820060100

39. Stalpers J.A. Identification of wood‐inhabiting fungi in pure culture // Studies in mycology. 1978. V. 16. P. 1–248.

40. Volobuev S.V., Shakhova N.V. In vitro assessment of ligninolytic and cellulolytic activities for 14 Agaricomycetes species, new to Bryansk Oblast (European Russia) // Вестник Томского государственного университета. Биология. 2023. N 63. С. 59–76. https://doi.org/10.17223/19988591/63/4

41. Psurtseva N.V., Kiyashko A.A., Senik S.V., Shakhova N.V., Belova N.V. The conservation and study of macromycetes in the Komarov Botanical Institute Basidiomycetes Culture Collection — their taxonomical diversity and biotechnological prospects // Journal of Fungi. 2023. V. 9. N 12. Art. 1196. https://doi.org/10.3390/jof9121196

42. Volobuev S., Shakhova N. Towards the discovery of active lignocellulolytic enzyme producers: a screening study of xylotrophic macrofungi from the Central Russian Upland // Iranian Journal of Science and Technology, Transactions A: Science. 2022. V. 46. N 1. P. 91–100. https://doi.org/10.1007/s40995‐021‐01245‐7

43. Shakhova N., Volobuev S. Cultural and enzymatic activity studies of a pathogenic wood‐decaying fungus Fomitiporia hippophaeicola (Hymenochaetales, Basidiomycota), recollected in the Eastern Caucasus // Archives of Microbiology. 2023. V. 205. N 6. Art. 249. https://doi.org/10.1007/s00203‐023‐03587‐9

44. Kut K., Stefaniuk I., Bartosz G., Sadowska‐Bartosz I. Formation of a purple product upon the reaction of ABTS radicals with proteins // International Journal of Molecular Sciences. 2023. V. 24. N 10. Art. 8912. https://doi.org/10.3390/ijms24108912

45. Hericium cirrhatum (Pers.) Nikol. // The IUCN Global Fungal Red List initiative. URL: https://redlist.info/iucn/species_view/298405 (дата обращения: 16.11.2025)

46. Красная книга Липецкой области. Том 1: Растения, грибы, лишайники. Воронеж: АО «Воронежская областная типография», 2024. 400 с.

47. Красная книга Удмуртской Республики. Животные, растения, лишайники, грибы. Изд. 3‐е, доп., перераб. Белгород: Константа, 2023. 500 с.

48. Красная книга Республики Коми. 3‐е изд. Сыктывкар, 2019. 768 с.

49. Красная книга Ханты‐Мансийского автономного округа – Югры: животные, растения, грибы. Изд. 3‐е, перераб. и доп. / отв. ред. В. П. Стариков. Кемерово: ООО «Вектор‐принт», 2024. 520 с.

50. Красная книга Красноярского края. В 2 т. Т. 2. Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды растений и грибов. 3‐изд., перераб. и доп. Красноярск, 2022. 762 с.

51. Красная книга Амурской области: Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды животных, растений и грибов. 2‐е издание, испр., перераб. и доп. Благовещенск: Изд‐во Дальневост. гос. аграр. ун‐та, 2020. 499 c.

52. Crockatt M.E., Pierce G.I., Camden R.A., Newell P.M., Boddy L. Homokaryons are more combative than heterokaryons of Hericium coralloides // Fungal Ecology. 2008. V. 1. N 1. P. 40–48. https://doi.org/10.1016/j.funeco.2008.01.001

53. Julian A.V., Wright C.A., Reyes R.G. Prelude to successful cultivation of Hericium in the Philippines: understanding its mycelial growth response on different culture media and its antibacterial activity // International Journal of Pharmaceutical Research and Allied Sciences. 2018. V. 7. N 2. P. 1–7.

54. Shakhova N.V., Volobuev S.V. Revealing new active and biotechnologically perspective producers of oxidative and cellulolytic enzymes among pure cultures of xylotrophic Agaricomycetes from the Southern Non‐Chernozem zone of the European part of Russia // Current Research in Environmental & Applied Mycology (Journal of Fungal Biology). 2020. V. 10. N 1. P. 113–119. https://doi.org/10.5943/cream/10/1/12

55. Gonkhom D., Luangharn T., Hyde K.D., Stadler M., Thongklang N. Optimal conditions for mycelial growth of medicinal mushrooms belonging to the genus Hericium // Mycological Progress. 2022. V. 21. Art. 82. https://doi.org/10.1007/s11557‐022‐01829‐6

56. Nguyen B.T., Ngo N., Le V., Nguyen L., Tran A., Nguyen L.H. Identification of optimal culture conditions for mycelial growth and cultivation of monkey head mushrooms (Hericium erinaceus (Bull.: fr.) Pers) // Vietnam Journal of Agricultural Sciences. 2018. V. 1. N 2. P. 117–126. https://doi.org/10.31817/vjas.2018.1.2.01

57. Eichlerová I., Baldrian P. Ligninolytic enzyme production and decolorization capacity of synthetic dyes by saprotrophic white rot, brown rot, and litter decomposing basidiomycetes // Journal of Fungi. 2020. V. 6. N 4. Art. 301. https://doi.org/10.3390/jof6040301

58. Van La T., Sung B.H., Kim S. Biocatalytic characterization of Hericium erinaceus laccase isoenzymes for the oxidation of lignin derivative substrates // International Journal of Biological Macromolecules. 2023. V. 241. Art.124658. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2023.124658

59. Kut K., Bartosz G., Sadowska‐Bartosz I. Denaturation and digestion increase the antioxidant capacity of proteins // Processes. 2023. V. 11. N 5. Art. 1362. https://doi.org/10.3390/pr11051362

60. Houée‐Lévin C., Bobrowski K., Horakova L., Karademir B., Schöneich C., Davies M.J., Spickett C.M. Exploring oxidative modifications of tyrosine: an update on mechanisms of formation, advances in analysis and biological consequences // Free Radical Research. 2015. V. 49. N 4. P. 347–373. https://doi.org/10.3109/10715762.2015.1007968

61. Popa G., Bubuianu C., Fidler G., Cornea C.P. Effects of culture media on laccase producing white‐rot fungi // Scientific Bulletin. Series F. Biotechnologies. 2015. V. XIX. P. 252–256.

62. Rao R.G., Ravichandran A., Kandalam G., Kumar S.A., Swaraj S., Sridhar M. Screening of wild basidiomycetes and evaluation of the biodegradation potential of dyes and lignin by manganese peroxidases // Bio Resources. 2019. V. 14. N 3. P. 6558–6576.

63. Nicolcioiu M.B., Popa G., Matei F. Biochemical investigations of different mushroom species for their biotechnological potential // Proceedings of Conference “Agriculture for Life Life for Agriculture”. V. 1. 2018. P. 562–567.

64. Gulzar A.B.M., Vandana U.K., Paul P., Mazumder P.B. The role of mushrooms in biodegradation and decolorization of dyes // An Introduction to Mushroom. Chapter 6. 2020. P. 93–115. http://dx.doi.org/10.5772/intechopen.86908