Оценка пораженности крупного рогатого скота вирусом лейкоза в Республике Дагестан с помощью ПЦР‐диагностики

   Цель. Оценка пораженности крупного рогатого скота вирусом лейкоза с помощью ПЦР‐диагностики в стадах Республики Дагестан и исследование молекулярно‐генетических характеристик циркулирующих вирусов.

   Материалы и методы. Исследовано 150 образцов крови КРС. ПЦР‐диагностику образцов на наличие вируса лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС) проводили тест‐системой РеалБест‐Вет ДНК ВЛКРС и с лабораторным набором праймеров. Часть образцов была просеквенирована методом Сэнгера, выполнен их филогенетический анализ.

   Результаты. Из 150 образцов положительными на наличие ВЛКРС оказались 24. В Унцукульском районе ни в одном из 16 образцов не выявлена ДНК ВЛКРС. В Карабудахкентском районе из 40 – в 2‐х (5 %), в Буйнакском – в 1 из 30 (3,3 %) и в Бабаюртовском – в 21 из 60 был обнаружен ВЛКРС (35 %). Для 13 ВЛКРС получены и расшифрованы фрагменты гена env размером 1000 п. н. Согласно филогенетичеcкому анализу 7 образцов ВЛКРС относятся к 7, а 6 – к 4 генотипу ВЛКРС. ВЛКРС 4 генотипа, выделенные в Бабаюртовском районе, кластеризуются с вирусами из Казахстана, вирусы 4 генотипа других хозяйств – с российскими ВЛКРС. Исследованные образцы 4 генотипа не образовывали общих кластеров. Для ВЛКРС 7 генотипа, выделенного в хозяйствах Бабаюртовского района, напротив, наблюдалось объединение последовательностей в один кластер генетически близких вирусов.

   Заключение. Выявлены существенные отличия в пораженности скота в хозяйствах Дагестана. Не обнаружено закономерностей регистрации случаев ВЛКРС с определенной породой КРС или с возрастом животного. Показано, что в республике циркулируют вирусы 7 и 4 генотипов. Для ВЛКРС 4 генотипа предполагается наличие разных путей его заноса в хозяйства, при этом связанные цепочки распространения вирусов не найдены. Для ВЛКРС 7 генотипа зарегистрирована передача вируса, что указывает на необходимость усиления мер профилактики лейкоза в хозяйстве.

1. NAHMS‐USDA Bovine Leukosis Virus on U.S. // Dairy Operations. 2007.

2. Enzootic bovine leucosis // World Organisation for Animal Health. URL: https://www.woah.org/en/disease/enzootic-bovine-leukosis/ (дата обращения: 16. 11. 2023)

3. Gulyukin M.I., et al. Control and trends in the epizootic situation of bovine leukemia in 2000–2016 // Russian Journal of Agricultural and Socio‐Economic Sciences. 2017. V. 71. N 11. P. 530–537. doi: 10.18551/rjoas.2017-11.70

4. Nuotio L., et al. Eradication of enzootic bovine leukosis from Finland // Preventive Veterinary Medicine. 2003. V. 59. N 1–2. P. 43–49. doi: 10.1016/s0167-5877(03)00057-6

5. Thompson K.G., Johnstone A.C., Hilbink F. Enzootic bovine leukosis in New Zealand ‐ a case report and update // New Zealand Veterinary Journal. 1993. V. 41. N 4. P. 190–194. doi: 10.1080/00480169.1993.35767

6. Bartlett P.C., et al. Current Developments in the Epidemiology and Control of Enzootic Bovine Leukosis as Caused by Bovine Leukemia Virus // Pathogens. V. 9. Iss. 12. doi: 10.3390/pathogens9121058

7. Yang Y., et al. Bovine leukemia virus infection in cattle of China: Association with reduced milk production and increased somatic cell score // Journal of Dairy Science. 2016. V. 99. N 5. P. 3688–3697. doi: 10.3168/jds.2015-10580

8. Murakami K., et al. The recent prevalence of bovine leukemia virus (BLV) infection among Japanese cattle // Vet Microbiol. 2011. V. 148. N 1. P. 84–88. doi: 10.1016/j.vetmic.2010.08.001

9. Lee E., et al. Sequencing and phylogenetic analysis of the gp51 gene from Korean bovine leukemia virus isolates // Virol J. 2015. V. 12. N 1. doi: 10.1186/s12985-015-0286-4

10. Kuzmin V., et al. Spread Dynamics of Leucosis in Cattle in Livestock Farms of the Russian Federation for 2000–2018 // KnE Life Sciences. 2019. P. 666–673. doi: 10.18502/kls.v4i14.5655

11. Budulov N.R., et al. Bovine leukemia virus occurrence in Dagestan // Veterinary Science Today. 2023. V. 12. N 2. P. 111–118. doi: 10.29326/2304-196X-2023-12-2-111-118

12. Gao A., Kouznetsova V.L., Tsigelny I.F. Bovine leukemia virus relation to human breast cancer: Meta‐analysis // Microb. Pathog. 2020. V. 149. P. 104417. doi: 10.1016/j.micpath.2020.104417

13. Schwingel D., et al. Bovine leukemia virus DNA associated with breast cancer in women from South Brazil // Scientific Reports. 2019. V. 9. N 1. P. 1–7. doi: 10.1038/s41598-019-39834-7

14. Buehring G.C., et al. Bovine leukemia virus linked to breast cancer in Australian women and identified before breast cancer development // PLoS One. 2017. V. 12. N 6. doi: 10.1371/journal.pone.0179367

15. Зиннатов Ф.Ф, Гибадулина И.Р., Хазипов Н.З., Тюрикова Р.П., Камалов Б.В. Детекция и типизация вируса лейкоза крупного рогатого скота // Вятский медицинский вестник. 2007. N 4. С. 48–50.

16. Крюков В.И., Шалимова О.А., Друшляк Н.Г., Пикунова А.В. ДНК‐диагностика в селекции крупного рогатого скота // Вестник ОрелГАУ: Научное обеспечение животноводства. 2012. N 1. С. 62–68.

17. Чижова Л.Н., Белов Д.Е. Использование полимеразной цепной реакции в диагностике лейкоза КРС // Сборник научных трудов Ставропольского научно‐исследовательского института животноводства и кормопроизводства. 2004. Т. 2. N 2–2. С. 65–69.

18. Бабошко Д.А., Гашникова Н.М., Тотменин А.В., Нефедова А.А., Осипова И.П., Екушов В.Е., Рожков О.А., Кузьмин А.И., Флеер М.В. Генетическое разнообразие ВЛКРС, распространенных на территории Коченевского района Новосибирской области // Ветеринария и кормление. N 7. C. 51–53. URL: https://elibrary.ru/item.asp?id=47444643&ysclid=lr6e05h43950789258