Паразитофауна птиц в фермерских хозяйствах горной зоны Армении

Цель исследования – изучение паразитофауны домашней птицы (кур, индеек, гусей) в условиях горной зоны Армении (Гегаркуникский, Тавушский регионы).

Сбор материала проводили в течение 2022–2023 гг. в двух регионах горной зоны Армении. Всего исследовано 107 проб фекалий птиц и 130 моллюсков вида Lymnaea stagnalis (Linnaeus, 1758) семейства Lymnaeidae – промежуточных хозяев биогельминтов. Исследование и видовое определение паразитов проводились в лаборатории общей гельминтологии и паразитологии Научного центра зоологии и гидроэкологии НАН РА.

В результате изучения видового состава паразитофауны домашних птиц (кур, индеек, гусей), зараженности их гельминтами и простейшими зарегистрированы 3 вида нематод (Ascaridia galli, Capillaria obsignata, Singamus trachea), 1 вид трематод (Echinostoma revolutum) и 1 вид простейших (Eimeria sp.). У всех птиц регистрировали смешанные инвазии (гельминты + простейшие). Степень зараженности гельминтами и простейшими была разной. Эймерии встречались у всех обследованных птиц с экстенсивностью инвазии от 36 % до 100 % при высоких показателях интенсивности инвазии. Наиболее высокую степень экстенсивности гельминтозной инвазии регистрировали при нематодозах, до 86 % при аскаридиозе при низких показателях интенсивности инвазии, что, видимо, обусловлено сезонными изменениями и зональными особенностями инвазии, а также своевременном проведении лечебных и профилактических мероприятий в хозяйствах.

Своевременное выявление и изучение распространения гельминтов домашних птиц и вызываемых ими заболеваний имеет важное значение для сохранения их здоровья, продуктивности и получения высококачественной продукции.

1. Мовсесян С.О., Никогосян М.А., Петросян Р.А., Кузнецов Д.Н. Нематоды и акантоцефалы фауны юга Малого Кавказа. Центр паразитологии Ин-та проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН. М.:Товарищество научных изданий КМК, 2017. 445 с.

2. Богач М.В. Березовський А.В., Тараненко І.Л. Інвазійні хвороби свійської птиці. Київ, Ветінформ. 2009. 224 с.

3. Dumanlı Z., Aktaş M. Eimeriidae (Coccidiosis in Poultry). In: Dumanlı N, Karaer KZ, eds. Veterinary Protozoology. 2nd ed. Ankara: Medisan Publishing House, 2015. P. 105–124.

4. Song H., Liu D., Xu J., et al. The endogenous development and pathogenicity of Eimeria anseris (Kotlan, 1932) in domestic goslings // Parasitol Res. 2017. V. 116. P. 177–183.

5. Galli G.M., Baldissera M.D., Griss L.G., et al. Intestinal injury caused by Eimeria spp. impairs the phosphotransfer network and gain weight in experimentally infected chicken chicks // Parasitol Res. 2019. V. 118. P. 1573–1579.

6. Griss L.G., Galli G.M., Fracasso M., et al. Oxidative stress linked to changes of cholinesterase and adenosine deaminase activities in experimentally infected chicken chicks with Eimeria spp. // Parasitol Int. 2019. V. 71. P. 11–17.

7. Маршалкіна Т.В. Еймеріоз курей, розробка імунізуючого препарату із Eimeria tenella (Railliet, Lucet, 1891) з прискореним циклом розвитку : дис. … канд. вет. наук. К., 2011. 190 с.

8. Голубев А.П. и др. Потенциал роста численности популяций большого прудовика Lymnaea stagnalis (Gastropoda, Pulmonata) – основного промежуточного хозяина трематод в очагах церкариозов приразных способах размножения // Здоровье и окружающая среда. Минск, 2007. Вып. 9. С. 232–240.

9. Mohanta U.K., Watanabe T., Anisuzzaman, Ohari Y., Itagaki T. Characterization of Echinostoma revolutum and Echinostoma robustum from ducks in Bangladesh based on morphology, nuclear ribosomal ITS2 and mitochondrial nad1 sequences // Parasitol Int. 2019. V. 69. P. 1–7.

10. Labony S.S. et al. Genetic analysis, pathology, and vectors of echinostomiasis, a zoonotic helminth infection in chickens in Bangladesh // Poult Sci. 2022. V. 101(3). Article ID: 101682.