Противовирусная активность модифицированных олигонуклеотидов в лимфоидных клетках человека, инфицированных ВИЧ‐1
https://doi.org/10.18470/1992-1098-2024-4-5
Аннотация
Цель – исследовать способность к проникновению в клетки и антиретровирусные свойства модифицированных олигодезоксири‐бонуклеотидов, направленных на высоко консервативные участки генома ВИЧ‐1. Исследование проводили с использованием модифицированных олигонуклеотидов, содержащих тиофосфатные, фосфорилгуанидиновые или додецильные остатки.
Изучение способности олигонуклеотидов к ингибированию вируса было проведено с использованием модели лимфоидной культуры клеток человека МТ4, инфицированных охарактеризованным высокопродуктивным штаммом ВИЧ‐1, относящимся к геноварианту субтипа А6, широко распространенного на территории Российской Федерации. Оценку проникновения олигонуклеотидов в клетки МТ4 проводили методом конфокальной микроскопии.
Показано, что тиофосфат‐ и додецил‐содержащие олигонуклеотиды способны проникать внутрь клеток без использования каких‐либо дополнительных трансфецирующих агентов. Установлено, что тиофосфатные олигонуклеотиды, трансфецированные в составе дуплекса с додецил‐содержащими производными, локализуются внутри клетки в ядре и ядрышке и способны подавлять репродукцию высокопродуктивного штамма ВИЧ‐1. Для исследованных олигонуклеотидных производных определены 50%‐ная токсичная доза (ТС50) и 50%‐ная ингибирующая концентрация (IC50), значение которой в случае тиофосфатных олигонуклеотидов составило менее 0,5 мкМ.
Полученные данные свидетельствуют о возможности использования исследованных модифицированных олигонуклеотидов в качестве потенциальных противовирусных агентов в отношении ВИЧ‐1.
Ключевые слова
Об авторах
Л. Г. ГотфридРоссия
Людмила Г. Готфрид, м.н.с.
630559, рп. Кольцово, Новосибирская область. Тел. +79134506795
А. С. Павлова
Россия
Анна С. Павлова
Новосибирск
М. С. Купрюшкин
Россия
Максим С. Купрюшкин
Новосибирск
И. А. Пышная
Россия
Инна А. Пышная
Новосибирск
Н. М. Гашникова
Россия
Наталья М. Гашникова
Кольцово
Список литературы
1. Ожмегова Е.Н., Бобкова М.Р. Лекарственная устойчивость ВИЧ: прежние и современные тенденции // Вопросы вирусологии. 2022. Т. 67. N 3. С. 193–205. https://doi.org/10.36233/0507-4088-113
2. Xun J. et al. Editing out HIV: application of gene editing technology to achieve functional cure // Retrovirology. 2021. V. 18. N 1. P. 39. https://doi.org/10.1186/s12977-021-00581-1
3. splicing with an elongated recognition domain is an optimal candidate for combination HIV-1 gene therapy // Molecular Therapy-Nucleic Acids. 2019. V. 18. P. 815–830. https://doi.org/10.1016/j.omtn.2019.10.011
4. Virgilio A. et al. Novel monomolecular derivatives of the anti-HIV-1 G-quadruplex-forming Hotoda’s aptamer containing inversion of polarity sites // European Journal of Medicinal Chemistry. 2020. V. 208. Article id: 112786. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2020.112786
5. Cena-Diez R. et al. Novel naturally occurring dipeptides and single-stranded oligonucleotide act as entry inhibitors and exhibit a strong synergistic anti-HIV-1 profile // Infectious Diseases and Therapy. 2022. V. 11. N 3. P. 1103–1116. https://doi.org/10.1007/s40121-022-00626-8
6. Torbett B., Goodsell D., Richman D. Targeting the HIV RNA Genome: High-Hanging Fruit Only Needs a Longer Ladder // Current Topics in Microbiology and Immunology. 2015. V. 389. P. 147–169. https://doi.org/10.1007/82_2015_434
7. Virgilio A. et al. Novel monomolecular derivatives of the anti-HIV-1 G-quadruplex-forming Hotoda’s aptamer containing inversion of polarity sites // European Journal of Medicinal Chemistry. 2020. V. 208. Article id: 112786.https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2020.112786
8. Пашков Е.А., Пак А.В., Пашков Е.П., Быков А.С., Буданова Е.В., Поддубиков А.В., Свитич О.А., Зверев В.В. Перспектива применения препаратов на основе явления РНК-интерференции против ВИЧ-инфекции // Вопросы вирусологии. 2022. Т. 67. N 4. С. 278–289. https://doi.org/10.36233/0507-4088-124
9. Lj R. A simple method of estimating fifty per cent endpoints // Am J Hyg. 1938. V. 27. P. 493–495. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.aje.a118408
10. Markov O.V. et al. Transport Oligonucleotides—A Novel System for Intracellular Delivery of Antisense Therapeutics // Molecules. 2020. V. 25. N 16. Article id: 3663. https://doi.org/10.3390/molecules25163663
11. Kupryushkin M.S., Pyshnyi D.V., Stetsenko D.A. Phosphoryl guanidines: a new type of nucleic acid analogues // Acta Naturae. 2014. V. 6. N 4 (23). P. 116–118. https://doi.org/10.32607/20758251-2014-6-4-116-118
12. Lomzov A.A. et al. Diastereomers of a monosubstituted phosphoryl guanidine trideoxyribonucleotide: isolation and properties // Biochemical and biophysical research communications. 2019. V. 513. N 4. P. 807–811. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2019.04.024
13. Crooke S.T. et al. The interaction of phosphorothioatecontaining RNA targeted drugs with proteins is a critical determinant of the therapeutic effects of these agents // Journal of the American Chemical Society. 2020. V. 142. N 35. P. 14754–14771. https://doi.org/10.1021/jacs.0c04928
14. Crooke S.T., Vickers T.A., Liang X. Phosphorothioate modified oligonucleotide–protein interactions // Nucleic acids research. 2020. V. 48. N 10. P. 5235–5253. https://doi.org/10.1093/nar/gkaa299
15. Juliano R.L. The delivery of therapeutic oligonucleotides // Nucleic acids research. 2016. V. 44. N 14. P. 6518–6548. https://doi.org/10.1093/nar/gkw236
16. Graham M.J. et al. In vivo distribution and metabolism of a phosphorothioate oligonucleotide within rat liver after intravenous administration // Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 1998. V. 286. N 1. P. 447–458.
17. Crooke S.T. et al. Cellular uptake and trafficking of antisense oligonucleotides // Nature biotechnology. 2017. V. 35. N 3. P. 230–237. https://doi.org/10.1038/nbt.3779
18. Iversen P.L. et al. Cellular uptake and subcellular distribution of phosphorothioate oligonucleotides into cultured cells // Antisense research and development. 1992. V. 2. N 3. P. 211–222.
19. Lorenz P. et al. Nucleocytoplasmic shuttling: a novel in vivo property of antisense phosphorothioate oligodeoxynucleotides // Nucleic Acids Research. 2000. V. 28. N 2. P. 582–592. https://doi.org/10.1093/nar/28.2.582
20. Turner J.J., Arzumanov A.A., Gait M.J. Synthesis, cellular uptake and HIV-1 Tat-dependent trans-activation inhibition activity of oligonucleotide analogues disulphide-conjugated to cell-penetrating peptides // Nucleic acids research. 2005. V. 33. N 1. P. 27–42. https://doi.org/10.1093/nar/gki142
21. Takahashi M. et al. Dual mechanisms of action of selfdelivering, anti-HIV-1 FANA oligonucleotides as a potential new approach to HIV therapy // Molecular Therapy-Nucleic Acids. 2019. V. 17. P. 615–625. https://doi.org/10.1016/j.omtn.2019.07.001
22. Zhou J., Satheesan S., Li H., Weinberg M.S., Morris K.V., Burnett J.C., Rossi J.J. Cell-Specific RNA Aptamer against Human CCR5 Specifically Targets HIV-1 Susceptible Cells and Inhibits HIV-1 Infectivity // Chemistry & Biology. 2015. V. 22. N 3. P. 379–390. https://doi.org/10.1016/j.chembiol.2015.01.005
Рецензия
Для цитирования:
Готфрид Л.Г., Павлова А.С., Купрюшкин М.С., Пышная И.А., Гашникова Н.М. Противовирусная активность модифицированных олигонуклеотидов в лимфоидных клетках человека, инфицированных ВИЧ‐1. Юг России: экология, развитие. 2024;19(4):57-67. https://doi.org/10.18470/1992-1098-2024-4-5
For citation:
Gotfrid L.G., Pavlova A.S., Kupryushkin M.S., Pyshnaya I.A., Gashnikova N.M. Antiviral activity of modified oligonucleotides in human lymphoid cells infected with a strain of HIV‐1. South of Russia: ecology, development. 2024;19(4):57-67. (In Russ.) https://doi.org/10.18470/1992-1098-2024-4-5