Влияние новосинтезированных теллурсодержащих цианиновых красителей на интенсивность оксидативных процессов в организме млекопитающих

Целью данной работы явилось исследование влияния новых синтезированных теллуроорганических соединений (ТОС) на показатели интенсивности окислительных процессов в организме млекопитающих – крови и печени крыс.

Эксперименты были выполнены на белых беспородных крысах, которым однократно вводили различные производные ТОС (0,01 г/кг). На следующие сутки животных декапитировали, собирали кровь и выделяли печень. В плазме крови, эритроцитах и гомогенате печени определяли содержание продуктов окислительной модификации липидов и белков, а также низкомолекулярного антиоксиданта – глутатиона.

Обнаружено, что все исследованные производные ТОС существенно увеличивают интенсивность перекисного окисления липидов в эритроцитах и гепатоцитах, о чем свидетельствует многократное повышение в них концентрации малонового диальдегида (МДА). При этом ТОС подавляют уровни окислительных повреждений белков печени, что выражается в существенном снижении содержания в них карбонильных групп. Исследование содержания глутатиона в эритроцитах крыс показало отсутствие каких‐либо существенных эффектов ТОС на данный антиоксидант в эритроцитах, однако в печени обнаружены изменения его концентрации, которые зависят от природы ТОС (для ТОС1 и ТОС3 снижение, а для ТОС2 – незначительное повышение).

Таким образом, новосинтезированные ТОС демонстрируют выраженные прооксидантные свойства, значительно повышая интенсивность окислительных процессов в липидах, что делает их перспективными средствами противобактериальной, противовирусной и противоопухолевой терапии.

1. Адиева А.А., Умарова Ю.А., Меджидова М.Г., Меджидов А.Г. Перспективы развития биопродовольственной промышленности в России // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2016. N 12–7. С. 1261– 1265. URL: https://appliedresearch.ru/ru/article/view?id=11025 (дата обращения: 27.08.2023)

2. Gross M., Stanciu E., Kenigsbuch‐Sredni D., Sredni B., Pinhasov A. The immunomodulatory tellurium compound ammonium trichloro (dioxoethylene‐O,O') tellurate reduces anxiety‐like behavior and corticosterone levels of submissive mice // Behavioural Pharmacology. 2017. V. 28. N 6. P. 458–465. https://doi.org/10.1097/FBP.0000000000000319

3. Halpert G., Halperin Sheinfeld M., Monteran L., Sharif K., Volkov A., Nadler R., Schlesinger A., Barshak I., Kalechman Y., Blank M., Shoenfeld Y., Amital H. The tellurium‐based immunomodulator, AS101 ameliorates adjuvant‐induced arthritis in rats // Clinical and Experimental Immunology. 2021. V. 203. N 3. P. 375–384. https://doi.org/10.1111/cei.13553

4. Piña M.L.N., Bauzá A. On the Importance of Halogen and Chalcogen Bonds in the Solid State of Nucleic Acids: A Combined Crystallographic and Theoretical Perspective // International Journal of Molecular Sciences. 2023. V. 24. N 17. https://doi.org/10.3390/ijms241713035

5. Vávrová S., Struhárňanská E., Turňa J., Stuchlík S. Tellurium: A Rare Element with Influence on Prokaryotic and Eukaryotic Biological Systems // International Journal of Molecular Sciences. 2021. V. 22. N 11. P. 5924. https://doi.org/10.3390/ijms22115924

6. Pinheiro F.C., Bortolotto V.C., Araujo S.M., Couto S.F., Dahleh M.M.M., Cancela M., Neto J., Zeni G., Zaha A., Prigol M. Oxidative stress response system in Escherichia coli arising from diphenyl ditelluride (PhTe)2 exposure // Toxicology in Vitro. 2022. V. 83. https://doi.org/10.1016/j.tiv.2022.105404

7. Yang T.Y., Tseng S.P., Ho H.C., Chen L.H., Hsueh P.R., Lu P.L., Lin C.H., Wang L.C. In Vitro Evaluation of TelluriumBased AS101 Compound against Neisseria gonorrhoeae Infectivity // Microbiol Spectr. 2023. V. 11. N 2. Article id: e0149622. https://doi.org/10.1128/spectrum.01496‐22

8. Русецкая Н.Ю., Федотов И.В., Кофтина В.А., Бородулин В.Б. Соединения селена в редокс‐регуляции воспаления и апоптоза // Биомедицинская химия. 2019. Т. 65. N 3. С. 165–179. https://doi.org/10.18097/PBMC20196503165

9. Приказ Министерства здравоохранения Российской Федерации от 1 апреля 2016 «Об утверждении правил надлежащей лабораторной практики». 2016. N 199н. URL: https://normativ.kontur.ru/document?moduleId=1&documentId=278397 (дата обращения: 25.08.2023)

10. Адиева А.А., Климова Р.Р., Абакаров Г.М., Бекшоков К.С., Федорова Н.Е., Омарова Д.К., Кущ А.А., Джамалова С.А., Халимбекова А.М., Гусейнова А.Р. Цитотоксичность и противовирусная активность производных теллура в клетках, инфицированных вирусом простого герпеса и цитомегаловирусом in vitro // Юг России: экология, развитие. 2021. Т. 16. N 3. C. 108–118. https://doi.org/10.18470/1992‐1098‐2021‐3‐108‐118

11. Дубинина Е.Е., Пустыгина А.В. Окислительная модификация протеинов, ее роль при патологических состояниях // Укр. биохим. журн. 2008. Т. 80. N 6. С. 5– 18.

12. Scopes R.K. Protein Purification, (Principles and Practice) // Preparative Biochemistry. 1982. V. 14. N 1. P. 89–90. https://doi.org/10.1007/978‐1‐4757‐1770‐9