Preview

Юг России: экология, развитие

Расширенный поиск

Взаимодействие эндофитных микроорганизмов по отношению к циперметрину

https://doi.org/10.18470/1992-1098-2023-2-53-69

Аннотация

Цель.  Поиск  и  отбор  микроорганизмов,  обладающих  активными ферментативными свойствами для возможной биодеструкции пиретроидов. 
Материалы  и  методы.  Для  эффективного  скрининга  и  отбора  наиболее активных  изолятов  для  последующей  разработки  биотехнологических способов деструкции пестицидов и снижения их токсичности были отобраны пробы филосферы и ризосферы сельскохозяйственных культур, продовольственных  продуктов  и  др.  Из  отобранных  проб  было  выделено  23  изолята. Изоляты  оценивали  по  внутриклеточному  метаболизму  и  выработке экзоферментов.  Выделенные  микроорганизмы  были  идентифицированы  на основе  «Определителя  бактерий  Берджи».  Скрининг  микроорганизмов  для разработки  биотехнологических  способов  снижения  токсичности экотоксикантов  включал  следующие  этапы:  выбор  источников,  отбор  проб, посев  на  плотную  среду  для  выделения  чистой  культуры,  пересев  чистой культуры, исследование биологических свойств выделенных штаммов. 
Результаты.  С  целью  поиска  микроорганизмов  способных  утилизировать пиретроиды  получены  изоляты  микроскопических  грибов  и  бактерий.  Из    23 штаммов 12 обладали наиболее широким спектром активности, 5 штаммов показали наиболее выраженную и стабильную антагонистическую активность в  отношении  патогенных  микроорганизмов  при  различных  температурных параметрах от 30°С до 42°С (Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus). Для отобранных штаммов была проведена оптимизация  среды  для  активации  обменных  процессов  в  клетке. Оценивалась  активность  амилаз,  протеаз,  ксиланаз  и  целлюлаз  гриба Trichoderma,  и  протеаз  L.  plantarum,  L.  lactis,  B.  subtilis  и  Propionibacterium. Проведены  исследования  влияния  на  синтез  гидролитических  ферментов различных концентраций в культуральной среде в присутствии полисахаридов ксилана, целлюлозы, крахмала и белка казеина.  
Заключение.  Проведены  токсикологические  исследования  отобранных изолятов  и  композиции,  состоящей  из  этих  изолятов  в  виде  культуральной суспензии,  на  простейших  стилонихиях.  Биотестирование  на  водных обитателях выделенных микроорганизмов (Trichoderma, L. plantarum, L. lactis, B.  subtilis  и  Propionibacterium)  показало,  что  процент  гибели  инфузорий    (S.  mytilus)  в  опыте  и  контроле  не  имел  значительных  отличий.  Создана микробиологическая  композиция,  которую  возможно  использовать  для защиты  окружающей  среды  при  воздействии  токсикантов  агротехногенного происхождения. Отобранные штаммы были протестированы на возможность осуществлять биодеградацию пиретроидов на примере циперметрина.

Об авторах

Л. Р. Валиуллин
Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности; Всероссийский научно‐исследовательский институт фитопатологии
Россия

Ленар Р. Валиуллин, зав. сектором питательных сред и культур клеток

420075 г. Казань, ул. Научный городок 2. 

Тел. +79509698469 


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



Е. В. Скворцов
Казанский государственный аграрный университет
Россия

Казань


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



В. И. Егоров
Казанский государственный аграрный университет
Россия

Казань


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



Л. Ф. Алексейко
Гомельский государственный медицинский университет
Беларусь

Гомель


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



С. В. Климович
Гомельский государственный медицинский университет
Беларусь

Гомель


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



И. Э. Памирский
Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук
Россия

Краснообск


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



А. Ф. Артеменко
Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук
Россия

Краснообск


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



А. М. Захаренко
Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук
Россия

Краснообск


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



К. С. Голохваст
Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук
Россия

Краснообск


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



Список литературы

1. Chen S., Sun D., Chung J.S. Treatment of Pesticide Wastewater by Moving‐Bed Biofilm Reactor Combined with Fenton‐Coagulation Pretreatment // J. Hazard. Mater. 2007. V. 144. P. 577–584.

2. Egorov V.I., Aleyev D.V., Malanev A.V., Khalikova K.F., Galyautdinova G.G., Yamalova G.R., Tremasova A.M., Kadikov I.R., Saifutdinov A.M., Semenov E.I., Shuralev E.A., Smolentsev S.Yu. The use of sorbents for intoxication of chickens with imidacloprid // International Journal of Pharmaceutical Research. 2021. V. 13. N 1. P. 3225–3233.

3. Nayak S.K., Dash B., Baliyarsingh B. Microbial Remediation of Persistent Agrochemicals by Soil Bacteria: An Overview // Microb. Biotechnol. 2018. P. 275–301.

4. Abdallah O.I., Hanafi A., Ghani S.B.A., Ghisoni S., Lucini L. Pesticides Contamination in Egyptian Honey Samples // J. Consum. Prot. Food Saf. 2017. V. 12. P. 317–327.

5. Кузнецова Е.Л. Влияние дециса на кур // Материалы Международной конференции ветеринарных фармакологов и токсикологов, посвящённой 125‐летию Н.А. Сошественского. Казань. 2001. C. 73–74.

6. Liu C., Qu J., Wu M., Huang X., Li L. Cypermethrin triggers YY1‐mediated testosterone biosynthesis suppression // Ecotoxicol Environ Saf. 2021. V. 225. Article ID: 112792. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2021.112792

7. Aldridge W.N. Toxicolody of pyrethroids // Pestic. chem: Hum. Welfare and Environ. Pros.: 5th intern kongr. Kioto. 1982. N 3. P. 485–490.

8. Grey A.J., Soderlund D.M. Mammalian toxicolody of pyrethroids // Insecticides. Chichester: John Wiley and Sons. 1985. V. 5. P. 207–212.

9. White G.B. Pyrethroids – why is their use increasing // J. Toxicol. Clin. Toxicol. 1999. V. 37. N 3. Article ID: 361.

10. Cunha E.O., Reis A.D., Macedo M.B., Machado M.S., Dallegrave E. Braz. Ototoxicity of cypermethrin in Wistar rats // J Otorhinolaryngol. 2020. V. 86. Iss. 5. P. 587–592. https://doi.org/10.1016/j.bjorl.2019.02.007

11. Chen S., Lin Q., Xiao Y., Deng Y., Chang C., Zhong G., Hu M., Zhang L.H. Monooxygenase, a novel beta‐cypermethrin degrading enzyme from Streptomyces sp. // PLoS ONE. 2013. V. 8. Article ID: 75450.

12. Valiullin L.R., Titova V.Y., Skvortsov E.V., Muhammadiev R.S., Validov S.Z., Rud V.Y., Davydov V.V., Glinushkin A.P. Search for antagonists to protect plant raw materials from pathogens Earth and Environmental Science // All‐Russian Conference with International Participation Economic and Phytosanitary Rationale for the Introduction of Feed Plants. 2021. Article ID: 012005.

13. Wang H.X., Zhang R., Li Z., Wang L.S., Yu Y., Wang Q., Ding Z., Zhang J.P., Zhang M.R., Xu L.C. Cypermethrin induces Sertoli cell apoptosis through mitochondrial pathway associated with calcium // Toxicol Res. 2021. V. 10. N 4. P. 742–750. https://doi.org/10.1093/toxres/tfab056

14. Chen S., Geng P., Xiao Y., Hu M. Bioremediation of βcypermethrin and 3‐phenoxybenzaldehyde contaminated soils using Streptomyces aureus HP‐S‐01 // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2012. V. 94. P. 505–515.

15. Pankaj, Sharma A., Gangola S., Khati P., Kumar G., Srivastava A. Novel pathway of cypermethrin biodegradation in a Bacillus sp. strain SG2 isolated from cypermethrincontaminated agriculture field // Biotech. 2016. V. 6. Iss. 1. Article number: 45. doi: 10.1007/s13205‐016‐0372‐3

16. Ucar A., Özgeriş F.B., Yeltekin A.Ç., Parlak V., Alak G., Keleş M.S., Atamanalp M. J The effect of N‐acetylcysteine supplementation on the oxidative stress levels, apoptosis, DNA damage, and hematopoietic effect in pesticide‐exposed fish blood // Biochem Mol Toxicol. 2019. V. 6. Article ID: 22311. https://doi.org/10.1002/jbt.22311

17. Sharma R., Jindal R., Faggio C. Impact of cypermethrin in nephrocytes of freshwater fish Catla catla // Environ Toxicol Pharmacol. 2021. V. 88. Article ID: 103739. https://doi.org/10.1016/j.etap.2021.103739

18. Бадман Л.А., Волкова Н.В., Грекова Т.Д. и др. Справочное издание. Вредные химические вещества. Неорганические соединения V‐VIII групп. Л.: Химия, 1989. C. 442–473.

19. Sulaiman N., Chee Beng Y., Ahmad Bustamam F.K., Khairuddin NSK., Muhamad H. Fate of cypermethrin in Malaysian oil palm plantation // Drug Test Anal. 2020. V. 12. Iss. 4. P. 504–513. https://doi.org/10.1002/dta.2760

20. Yadav A., Tandon A., Seth B., Goyal S., Singh S.J., Tiwari S.K., Agarwal S., Nair S., Chaturvedi R.K. Cypermethrin Impairs Hippocampal Neurogenesis and Cognitive Functions by Altering Neural Fate Decisions in the Rat Brain // Mol Neurobiol. 2021. V. 58. P. 263–280. https://doi.org/10.1007/s12035‐020‐02108‐9

21. Di Bella G., Mottese A.F., Potortì A.G., Fede M.R., Sabatino G., Cicero N., Beltifa A., Dugo G., Lo Turco V. Organic pollution in PGI and non‐PGI lemons and related soils from Italy and Turkey // Nat Prod Res. 2019. V. 33. Iss. 21. P. 3089–3094. https://doi.org/10.1080/14786419.2018.1519818

22. Oumbouke W.A., Rowland M., Koffi A.A., Alou LPA., Camara S., N'Guessan R. Evaluation of an alphacypermethrin + PBO mixture long‐lasting insecticidal net VEERALIN® LN against pyrethroid resistant Anopheles gambiae s.s.: an experimental hut trial in M'bé, central Côte d'Ivoire // Parasit Vectors. 2019. V. 15. N 12. Article number: 544. https://doi.org/10.1186/s13071‐019‐3796‐x

23. Lissenden N., Kont M.D., Essandoh J., Ismail H.M. et. al. Review and Meta‐Analysis of the Evidence for Choosing between Specific Pyrethroids for Programmatic Purposes // Insects. 2021. V. 14. Iss. 12. Article number: 826. https://doi.org/10.3390/insects12090826

24. Ali M.H., Sumon K.A., Sultana M., Rashid H. Toxicity of cypermethrin on the embryo and larvae of Gangetic mystus, Mystus cavasius // Environ Sci Pollut Res Int. 2018. V. 25. N4. P. 3193–3199. https://doi.org/10.1007/s11356‐017‐9399‐1

25. Jin S., Yao X., Xu Z., Zhang X., Yang F. Estimation of soilspecific microbial degradation of alpha‐cypermethrin by compound‐specific stable isotope analysis // Environ Sci Pollut Res Int. 2018. V. 23. P. 22736–22743. https://doi.org/10.1007/s11356‐018‐2399‐y

26. Мельников Н.Н. Методическое указание по определению микроколичеств пестицидов в продуктах питания, кормах и внешней среде. М.: Госхимкомиссия. 1982. ч. 12. 301 c.

27. Seema J. Comparative assessment of growth and biodegradation potential of soil isolate in the presence of pesticides // J Biol Sci. 2013. V. 20. Iss. 3. P. 257–264. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2013.02.007

28. Akbar S., Sultan S., Kertesz M. Determination of cypermethrin degradation potential of soil bacteria along with plant growth‐promoting characteristics // Microbiol. 2015. V. 70. N 1. P. 75–84. https://doi.org/10.1007/s00284‐014‐0684‐7

29. Amin M., Raza Gurmani A., Rafique M., Ullah Khan S., Mehmood A., Muhammad D., Hussain Syed J.Saudi. Investigating the degradation behavior of Cypermethrin (CYP) and Chlorpyrifos (CPP) in peach orchard soils using organic/inorganic amendments // J Biol Sci. 2021. V. 28. Iss. 10. P. 5890–5896. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2021.06.035

30. Jiang W., Yao G., Jing X., Liu X., Liu D., Zhou Z. Effects of Cd2+ and Pb2+ on enantioselective degradation behavior of αcypermethrin in soils and their combined effect on activities of soil enzymes // Environ Sci Pollut Res Int. 2021. V. 28. Iss. 34. P. 47099–47106. https://doi.org/10.1007/s11356‐021‐13929‐z

31. Мельников Н.Н. Химия и технология пестицидов. М.: Наука, 1974. C. 209–226.

32. Yao G., Jing X., Liu C., Wang P., Liu X., Hou Y., Zhou Z., Liu D. Enantioselective degradation of alpha‐cypermethrin and detection of its metabolites in bullfrog (rana catesbeiana) // Ecotoxicol Environ Saf. 2017. V. 141. P. 93–97. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2017.03.019

33. Jiang W., Gao J., Cheng Z., Zhai W., Liu D., Zhou Z., Wang P. The influence of oxytetracycline on the degradation and enantioselectivity of the chiral pesticide beta‐cypermethrin in soil // Environ Pollut. 2019. V. 255. Part 1. Article ID: 113215. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2019.113215

34. Kanyika‐Mbewe C., Thole B., Makwinja R., Kaonga C.C. Monitoring of carbaryl and cypermethrin concentrations in water and soil in Southern Malawi // Environ Monit Assess. 2020. V. 192. Iss. 9. Article number: 595. https://doi.org/10.1007/s10661‐020‐08557‐y

35. Lu J., Wu Q., Yang Q., Li G., Wang R., Liu Y., Duan C., Duan S., He X., Huang Z., Peng X., Yan W., Jiang J. Molecular mechanism of reproductive toxicity induced by betacypermethrin in zebrafish // Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol. 2021. V. 239. Article ID: 108894. https://doi.org/10.1016/j.cbpc.2020.108894

36. Saied E., Fouda A., Alemam A.M., Sultan M.H., et. al. Evaluate the Toxicity of Pyrethroid Insecticide Cypermethrin before and after Biodegradation by Lysinibacillus cresolivuorans Strain HIS7 // Plants (Basel). 2021. V. 10. Iss. 9. Article ID: 1903. https://doi.org/10.3390/plants10091903

37. Yang Y., Ma S., Liu F., Wang Q., Wang X., et. al. Acute and chronic toxicity of acetamiprid, carbaryl, cypermethrin and deltamethrin to Apis mellifera larvae reared in vitro // Pest Manag Sci. 2020. V. 76. N 3. P. 978–985. https://doi.org/10.1002/ps.5606

38. Seven B., Kültiğin, Çavuşoğlu, Yalçin E., Acar A. Investigation of cypermethrin toxicity in Swiss albino mice with physiological, genetic and biochemical approaches // Sci Rep. 2022. V. 12. Article number: 11439. https://doi.org/10.1038/s41598‐022‐15800‐8

39. Raginov I.S., Egorov V.I., Valiullin L.R., Watanabe D., Balakin K.V., Murinov Y.I. Morphological and functional evaluation of the effect of novel pyrimidine derivatives on regeneration of the sciatic nerve in rats // Neurosci Lett. 2019. V. 706. P. 110–113. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2019.05.008

40. Akelma H., Kilic E.T., Salik F., Bicak E.A., Yektas A. Pyrethroid intoxication: A rare case report and literature review // J Clin Pract. 2019. V. 22. N 3. P. 442–444. DOI: 10.4103/njcp.njcp_241_18

41. Chen S., Geng P., Xiao Y., Hu M. Bioremediation of βcypermethrin and 3‐phenoxybenzaldehyde contaminated soils using Streptomyces aureus HP‐S‐01 // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2012. V. 94. P. 505–515.

42. Ruan Z.Y., Zhai Y., Song J.L., Shi Y.H., Li K., Zhao B., et al. Molecular cloning and characterization of a newly isolated pyrethroid‐degrading esterase gene from a genomic library of Ochrobactrum anthropi YZ‐1 // PLoS One. 2013. V. 8, Article ID: e77329. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0077329

43. Liu F.F., Chi Y.L., Wu S., Jia D.Y., Yao K. Simultaneous degradation of cypermethrin and its metabolite, 3phenoxybenzoic acid, by the cooperation of Bacillus licheniformis B‐1 and Sphingomonas sp. SC‐1 // J. Agric. Food Chem. 2014. V. 62. P. 8256–8262. https://doi.org/10.1021/jf502835n

44. Zhao J.Y., Chi Y.L., Xu Y.C., Jia D.Y., Yao K. Co‐metabolic degradation of β‐cypermethrin and 3‐phenoxybenzoic acid by co‐culture of Bacillus licheniformis B‐1 and Aspergillus oryzae M‐4 // PLoS One. 2016. V. 11. Article number: e0166796. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0166796

45. Pavelyev R.S., Zaripova Y.F., Yarkovoi V.V., Vinogradova S.S., et. al. Performance of Waterborne Polyurethanes in Inhibition of Gas Hydrate Formation and Corrosion: Influence of Hydrophobic Fragments // Molecules. 2020. V. 25. Iss. 23. Article ID: 5664. https://doi.org/10.3390/molecules25235664

46. Zhan H., Huang Y.H., Lin Z.Q., Bhatt P., Chen S.H. New insights into the microbial degradation and catalytic mechanism of synthetic pyrethroids // Environ. Res. 2020. V. 182. Article ID: 109138. https://doi.org/10.1016/j.envres.2020.109138

47. Gaughan L.C., Unai T., Gasida I.E. Permetrin metabolism in rats // Agric. Food. Chem. 1977. V. 25. P. 9–17.

48. Xu Z., Shen X., Zhang X.C., Liu W., Yang F. Microbial degradation of alpha‐cypermethrin in soil by compoundspecific stable isotope analysis // J Hazard Mater. 2015. V. 295. P. 37–42. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2015.03.062

49. Хоула Дж. Определитель бактерий Берджи: в 2 т. М.: Мир, 1997.

50. Miller G.L. Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar // Analytical Chemistry. 1959. V. 31. N 3. P. 426–428.

51. Najafi M.F., Deobagkar D., Deobagkar D. Purification and characterization of an extracellular amylase from Bacillus subtilis AX20 // Protein Exp. Purif. 2005. V. 41. P. 349–354.

52. Schuerg T., et al. Xylose induces cellulase production in Thermoascus aurantiacus // Biotechnol Biofuels. 2017. V. 10. Article number: 271. https://doi.org/10.1186/s13068‐017‐0965‐z

53. Gabriel R., et al. Development of genetic tools for the thermophilic filamentous fungus Thermoascus aurantiacus // Biotechnol Biofuels. 2020. V. 13. Article ID: 167. https://doi.org/10.1186/s13068‐020‐01804‐x

54. Cupp‐Enyard C. Sigma’s non‐specific protease activity assay – casein as a substrate // J. Vis. Exp. 2008. V. 19. Article ID: e899. DOI: 10.3791/899

55. Gabriel R., et al. The F‐box protein gene exo‐1 is a target for reverse engineering enzyme hypersecretion in filamentous fungi // PNAS. 2021. V. 118. Iss. 26. Article number: e2025689118. https://doi.org/10.1073/pnas.2025689118

56. Berg G., Hallmann J., Schulz B.J.E., Boyle C.J.C., Sieber T.N. Control of plant pathogenic fungi with bacterial endophytes. Berlin: Springer, 2006, pp. 53–69.

57. Chen Y., Gao X., Chen Y., Qin H., Huang L., Han Q. Inhibitory efficacy of endophytic Bacillus subtilis EDR4 against Sclerotinia access to microbial diversity for drug discovery from natural products. 2014. vol. 69. P. 49–55.

58. Mohamad O.A.A., Li L., Ma J.B., et.al. Evaluation of the Antimicrobial Activity of Endophytic Bacterial Populations From Chinese Traditional Medicinal Plant Licorice and Characterization of the Bioactive Secondary Metabolites Produced by Bacillus atrophaeus Against Verticillium dahlia // Front Microbiol. 2018. V. 9. Article ID: 924. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.00924

59. Mukhammadiev R.S., Mukhammadieva A.S., Skvortsov E.V., Valiullin L.R., Glinushkin A.P. Antagonistic properties and biocompatibility as important principles for development of effective and biosafety probiotic drugs iop // All‐Russian Conference with International Participation Economic and Phytosanitary Rationale for the Introduction of Feed Plants. 2021, Article ID: 012008.

60. Diabankana R.G.C., Afordoanyi D.M., Safin R.I., Nizamov R.M., Karimova L.Z., Validov S.Z. Antifungal Properties, Abiotic Stress Resistance, and Biocontrol Ability of Bacillus mojavensis PS17 // Curr Microbiol. 2021. V. 78. N 8. P. 3124–3132. https://doi.org/10.1007/s00284‐021‐02578‐7

61. Kelland M.A., Production Chemicals for the Oil and Gas Industry. CRC, Boca Raton, FL. 2014.

62. Erguven G.O., Yildirim N. The Evaluation of Imidacloprid Remediation in Soil Media by Two Bacterial Strains // Curr Microbiol. 2019. V. 76. N 12. P. 1461–1466. https://doi.org/10.1007/s00284‐019‐01774‐w

63. РД 52.24.421‐2012 Химическое потребление кислорода в водах. Методика выполнения измерений титриметрическим методом. Федеральная служба по гидрометеорологии и мониторингу окружающей среды (Росгидромет). Ростов‐на‐Дону, 2012. 20 с.

64. van Loon L.C. Plant responses to plant growth promoting rhizobacteria // Eur. J. Plant Pathol. 2007. V. 119. P. 243–254.

65. TariqJaveed M., Farooq T., Al‐Hazmi A.S., Hussain M.D., Rehman A.U. Role of Trichoderma as a biocontrol agent (BCA) of phytoparasitic nematodes and plant growth inducer // J Invertebr Pathol. 2021. V. 183. Article ID: 107626. https://doi.org/10.1016/j.jip.2021.107626

66. Alfiky A., Weisskopf L.J Deciphering Trichoderma‐PlantPathogen Interactions for Better Development of Biocontrol Applications // Fungi (Basel). 2021. V. 7. N 1. Article ID: 61. https://doi.org/10.3390/jof7010061

67. Apha AWWA, WPCF American Public Health Association, American Water Works Association, Water Pollution Control Federation, Washington. 2005.

68. Cove J.H., Holland K.T., Cunliffe W.J. Effects of Oxygen Concentration on Biomass Production, Maximum Specific Growth Rate and Extracellular Enzyme Production by Three Species of Cutaneous Propionibacteria Grown in Continuous Culture // Journal of General Microbiology. 1983. V. 129. P. 3327–3334.

69. Sa‐Pereira P., Costa‐Ferreira M., Aires‐Barros M.R. Enzymatic properties of a neutral endo‐ 1, 3 (4) ‐ xylanase Xyl II from Bacillus subtilis // Journal of Biotechnology. 2002. V. 94. N 3. P. 245–275.

70. Hasan B. Fermentation of fish silage using Lactobacillus pentosus // J Natur Indones. 2003. V. 4. N 1. P. 11–15.

71. Simova E., Simov Z., Beshkova D., Frengova G., Dimitrov Z., Spasov Z. Aminoacid profiles of lactic acid bacteria, isolated from kefir grains and kefir starter made from them // Int J Food Microbiol. 2004. V. 107. N 2. P. 112–123.

72. Savijoki K., Ingmer H., Varmanen P. Proteolytic systems of lactic acid bacteria // Appl Microbiol Biotechnol. 2004. V. 71. P. 394–404.

73. Chebotar V.K., Makarova N.M., Shaposhnikov A.I., Kravchenko L.V. Antifungal and phytostimulating characteristics of Bacillus subtilis Ch‐13 rhizospheric strain, producer biopreparations // Appl. Biochem. Microbiol. 2009. V. 45. N 4. P. 419–423.

74. Lim Y.H., Foo H.L., Loh T.C., Mohamad R., Abdullah N. Comparative studies of versatile extracellular proteolytic activities of lactic acid bacteria and their potential for extracellular amino acid productions as feed supplements // Journal of Animal Science and Biotechnology. 2019. V. 10. Iss. 15. P. 2–13.

75. . Jin X.L., Jing M., Chen X., Zhuang Z.X., Wang X.R., Lee F.S. A study on the relationship between BOD(5) and COD in a coastal seawater environment with a rapid BOD measurement system // Water Sci Technol. 2010. V. 61. Iss. 6. P. 1499–1503. https://doi.org/10.2166/wst.2010.810


Рецензия

Для цитирования:


Валиуллин Л.Р., Скворцов Е.В., Егоров В.И., Алексейко Л.Ф., Климович С.В., Памирский И.Э., Артеменко А.Ф., Захаренко А.М., Голохваст К.С. Взаимодействие эндофитных микроорганизмов по отношению к циперметрину. Юг России: экология, развитие. 2023;18(2):53‐69. https://doi.org/10.18470/1992-1098-2023-2-53-69

For citation:


Valiullin L.R., Skvortsov E.V., Egorov V.I., Alekseyko L.N., Klimovich S.V., Pamirsky I.E., Artemenko A.F., Zakharenko A.M., Golokhvast K.S. Interaction of endophytic microorganisms with respect to cypermethrin. South of Russia: ecology, development. 2023;18(2):53‐69. (In Russ.) https://doi.org/10.18470/1992-1098-2023-2-53-69

Просмотров: 407


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1992-1098 (Print)
ISSN 2413-0958 (Online)